Репарация ошибок репликации

Репара́ция оши́бок реплика́ции (система репарации ошибок репликации, репарация мисматчей, система репарации мисматчей; DNA mismatch repair system, MMR; мисматч-репарации), процессы исправления повреждений в структуре молекул ДНК, вызванных включением некомплементарного нуклеотида в ходе репликации.

История открытия и изучения

Исследования репарации ошибок репликации начались во 2-й половине 20 в. В период с 1970 до середины 1990-х гг. активно исследовались белки, входящие в состав системы репарации мисматчей: MutS, MutL, MutH, UvrD и др. В 1991 г. впервые сформулированы Амстердамские критерии, используемые для диагностирования наследственного неполипозного колоректального рака (hereditary nonpolyposis colorectal cancer syndrome, HNPCC), также известного как синдром Линча. В начале 2000-х гг. удалось установить взаимосвязь между синдромом Линча и мутациями в генах зародышевой системы репарации ошибок репликации. Мутации в генах MLH1, MSH2, MSH6 и PMS2 были обнаружены у значительной доли пациентов с синдромом Линча, а также у части пациентов с неустановленной генеалогией.

Схема репарации ошибок репликации

Некомплементарные пары нуклеотидов (мисматчи) чаще всего возникают в результате ошибок работы систем репликации. Включение некомплементарного нуклеотида приводит к таким мутациям, как трансверсии (замена пиримидинового основания на пуриновое и наоборот) и транзиции (пурин-пуриновые и пиримидин-пиримидиновые замены). Мисматч искажает вторичную структуру двойной спирали ДНК ввиду образования неканонических водородных связей, например за счёт кето-енольной таутомерии или образования хугстеновских (имидазольных) пар.

У прокариот ошибки репликации восстанавливаются с помощью комплекса ферментов MutS, MutL, MutH и др. Процесс репарации начинается с распознавания мисматча гомодимером белка MutS, который сканирует двойную спираль, идентифицируя мисматч по искажению остова ДНК. Используя аденозинтрифосфат (АТФ), MutS охватывает место повреждения и индуцирует изгиб ДНК на содержащем мисматч участке. При этом изменяется конформация как ДНК, так и белка. Образовавшийся комплекс белка MutS и ДНК, изменившей конформацию, приводит в действие белок MutL, который в свою очередь активирует белок MutH. Последний фермент производит инцизию (разрез) в остове повреждённой цепи ДНК. Образовавшийся свободный конец используется ферментом экзонуклеазой для того, чтобы вырезать олигонуклеотид между одноцепочечным разрывом и участком, содержащим мисматч, а также геликазой UrvD (MutU, Helicase II) для разрыва водородных связей между вырезаемой последовательностью и комплементарной цепью. Экзонуклеаза оставляет свободную 3’-гидроксильную группу, с которой репликативная ДНК-полимераза III с участием SSB-белков начинает синтезировать вырезанный олигонуклеотидный участок. Последним этапом репарации является лигирование бреши ДНК-лигазой.

Возможны различия протекания процесса на определённых стадиях, например в зависимости от положения разреза используются разные экзонуклеазы: если разрыв цепи с 5’-стороны, используется экзонуклеаза VII или RecJ; если с 3’-стороны, экзонуклеаза I, экзонуклеаза VII или экзонуклеаза X.

Особую роль играет такой фермент прокариот, как Dam-метилаза (DNA adenine methylase). Его функцией является метилирование аденина по положению N6 в составе последовательности 5’-GATC-3’ в обеих цепях. После репликации молекула ДНК является хемиметилированной (родительская цепь метилирована, а дочерняя – нет). За счёт этого система репарации может отличить, в какую из цепей оказался встроен неверный нуклеотид. Так, фермент MutH проявляет эндонуклеотическую активность только по отношению к неметилированной цепи.

В эукариотических клетках систему репарации мисматчей составляют белки, гомологичные прокариотическим, но более сложного строения. Функцию узнающего мисматч белка MutS в клетках человека выполняют два гетеродимера: MutSα, состоящий из MSH2 и MSH6, и MutSβ, получаемый объединением MSH2 и MSH3. Первый гетеродимерный фермент используется для узнавания одного или двух мисматчей, второй распознает повреждения структуры, вызванные большим числом некомплементарных пар. Человеческие белки MSH2, MSH3 и MSH6 (MutS homologs) не только выполняют ту же функцию, но и являются гомологами прокариотического белка MutS. Функцию белка MutL выполняет димер MutLα, состоящий из субъединиц человеческого MLH1 (MutL homologs), гомологичного прокариотическому белку MutL, и белка PMS2.

На данный момент не обнаружено структурных и функциональных гомологов MutH, однако при взаимодействии с белком PCNA (proliferating cells nuclear antigen) фермент MutLα проявляет эндонуклеазную активность и способен производить одноцепочечные разрывы на обеих цепях ДНК. При этом комплекс MutLα и PCNA является специфичным по отношению к дочерней цепи эндонуклеазы, т. к. PCNA, связанный с ДНК, асимметричен.

Функцию 5`-3`-экзонуклеазы выполняет эукариотическая экзонуклеаза I (EXO1). Эукариотическая 3`-5`-экзонуклеаза не была определена однозначно, но некоторые исследования демонстрируют наличие 3`-5`-экзонуклеазной активности у ДНК-полимеразы Polδ. Выявлена связь 3`-5`-экзонуклеазы MRE11 и системы репарации мисматчей. Функции ДНК-полимеразы III и SSB-белков выполняют репликативные ферменты и белки эукариот.

Заболевания, связанные с нарушением работы системы репарации мисматчей

У части пациентов с наследственным неполипозным раком толстой кишки были обнаружены нетипичные опухоли других тканей и органов, предположительно связанные с нарушением работы системы репарации ошибок репликации.

Нетипичные опухоли у пациентов с наследственным неполипозным раком толстой кишки

Нетипичное онкологическое заболевание Мутировавший ген зародышевой линии
Рак молочной железы Вариабельные гены
Рак коры надпочечников MSH2
Злокачественная фиброзная гистиоцитома MSH2
Карцинома предстательной железы MLH1
Анапластическая карцинома щитовидной железы MSH2
Меланома MSH2
Лейомиосаркома MSH2, MLH1
Глиосаркома MSH2
Аденокарцинома лёгкого MSH2
Серозная цистаденома поджелудочной железы MLH1
Перитонеальная мезотелиома MLH1
Ацинарно-клеточная карцинома

поджелудочной железы

MSH6
Эндокринное новообразование поджелудочной железы Не установлены

Литература

  • Bende S. M. The DNA binding properties of the MutL protein isolated from Escherichia coli / S. M. Bende, R. H. Grafström // Nucleic Acids Research. – 1991. – Vol. 19, № 7. – P. 1549–1555.
  • Yang W. Structure and function of mismatch repair proteins // Mutation Research/DNA Repair. – 2000. – Vol. 460, № 3/4. – P. 245–256.
  • Molecular biology of the gene / J. D. Watson, T. A. Baker, S. P. Bell [et al.]. – 6th ed. – San Francisco, CA : Pearson/Benjamin Cummings ; Cold Spring Harbor, NY : Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2008.
  • Selected Topics in DNA Repair / ed. by C. C. Chen. – Rijeka : InTech, 2011.
  • Guarné A. The Functions of MutL in Mismatch Repair: The Power of Multitasking // Progress in Molecular Biology and Translational Science. – 2012. – Vol. 110. – P. 41–70.
  • Unusual DNA mismatch repair–deficient tumors in Lynch syndrome: a report of new cases and review of the literature / Y. Karamurzin, Z. Zeng, Z. K. Stadler [et al.] // Human pathology. – 2012. – Vol. 43, № 10. – P. 1677–1687.
  • Молекулярная биология клетки. В 3 т. Т. 1 / Б. Альбертс, А. Джонсон, Д. Льюис [и др.]. – 5-е изд. – Ижевск : Регулярная и хаотическая динамика, 2013.
  • Kolodner R. D. A personal historical view of DNA mismatch repair with an emphasis on eukaryotic DNA mismatch repair // DNA Repair (Amst). – 2016. – Vol. 38. – P. 3–13.
  • Liu D. DNA mismatch repair and its many roles in eukaryotic cells / D. Liu, G. Keijzers, L. J. Rasmussen // Mutation Research/Reviews in Mutation Research. – 2017. – Vol. 773. – P. 174–187.
  • Дымшиц Г. М. Основные начала молекулярной биологии : учебное пособие / Г. М. Дымшиц, О. В. Саблина. – Новосибирск : [Новосибирский государственный университет], 2020.
Материалы портала bigenc.ru переданы в ведение АНО «Интернет-энциклопедия «РУВИКИ» на основе лицензионного соглашения. Возможны неточности в отображении материалов. Если у вас возникли вопросы или вы увидели ошибку, пожалуйста, сообщите нам на info@ruwiki.ru