Репарация ошибок репликации
Репара́ция оши́бок реплика́ции (система репарации ошибок репликации, репарация мисматчей, система репарации мисматчей; DNA mismatch repair system, MMR; мисматч-репарации), процессы исправления повреждений в структуре молекул ДНК, вызванных включением некомплементарного нуклеотида в ходе репликации.
История открытия и изучения
Исследования репарации ошибок репликации начались во 2-й половине 20 в. В период с 1970 до середины 1990-х гг. активно исследовались белки, входящие в состав системы репарации мисматчей: MutS, MutL, MutH, UvrD и др. В 1991 г. впервые сформулированы Амстердамские критерии, используемые для диагностирования наследственного неполипозного колоректального рака (hereditary nonpolyposis colorectal cancer syndrome, HNPCC), также известного как синдром Линча. В начале 2000-х гг. удалось установить взаимосвязь между синдромом Линча и мутациями в генах зародышевой системы репарации ошибок репликации. Мутации в генах MLH1, MSH2, MSH6 и PMS2 были обнаружены у значительной доли пациентов с синдромом Линча, а также у части пациентов с неустановленной генеалогией.
Схема репарации ошибок репликации
Некомплементарные пары нуклеотидов (мисматчи) чаще всего возникают в результате ошибок работы систем репликации. Включение некомплементарного нуклеотида приводит к таким мутациям, как трансверсии (замена пиримидинового основания на пуриновое и наоборот) и транзиции (пурин-пуриновые и пиримидин-пиримидиновые замены). Мисматч искажает вторичную структуру двойной спирали ДНК ввиду образования неканонических водородных связей, например за счёт кето-енольной таутомерии или образования хугстеновских (имидазольных) пар.
У прокариот ошибки репликации восстанавливаются с помощью комплекса ферментов MutS, MutL, MutH и др. Процесс репарации начинается с распознавания мисматча гомодимером белка MutS, который сканирует двойную спираль, идентифицируя мисматч по искажению остова ДНК. Используя аденозинтрифосфат (АТФ), MutS охватывает место повреждения и индуцирует изгиб ДНК на содержащем мисматч участке. При этом изменяется конформация как ДНК, так и белка. Образовавшийся комплекс белка MutS и ДНК, изменившей конформацию, приводит в действие белок MutL, который в свою очередь активирует белок MutH. Последний фермент производит инцизию (разрез) в остове повреждённой цепи ДНК. Образовавшийся свободный конец используется ферментом экзонуклеазой для того, чтобы вырезать олигонуклеотид между одноцепочечным разрывом и участком, содержащим мисматч, а также геликазой UrvD (MutU, Helicase II) для разрыва водородных связей между вырезаемой последовательностью и комплементарной цепью. Экзонуклеаза оставляет свободную 3’-гидроксильную группу, с которой репликативная ДНК-полимераза III с участием SSB-белков начинает синтезировать вырезанный олигонуклеотидный участок. Последним этапом репарации является лигирование бреши ДНК-лигазой.
Возможны различия протекания процесса на определённых стадиях, например в зависимости от положения разреза используются разные экзонуклеазы: если разрыв цепи с 5’-стороны, используется экзонуклеаза VII или RecJ; если с 3’-стороны, экзонуклеаза I, экзонуклеаза VII или экзонуклеаза X.
Особую роль играет такой фермент прокариот, как Dam-метилаза (DNA adenine methylase). Его функцией является метилирование аденина по положению N6 в составе последовательности 5’-GATC-3’ в обеих цепях. После репликации молекула ДНК является хемиметилированной (родительская цепь метилирована, а дочерняя – нет). За счёт этого система репарации может отличить, в какую из цепей оказался встроен неверный нуклеотид. Так, фермент MutH проявляет эндонуклеотическую активность только по отношению к неметилированной цепи.
В эукариотических клетках систему репарации мисматчей составляют белки, гомологичные прокариотическим, но более сложного строения. Функцию узнающего мисматч белка MutS в клетках человека выполняют два гетеродимера: MutSα, состоящий из MSH2 и MSH6, и MutSβ, получаемый объединением MSH2 и MSH3. Первый гетеродимерный фермент используется для узнавания одного или двух мисматчей, второй распознает повреждения структуры, вызванные большим числом некомплементарных пар. Человеческие белки MSH2, MSH3 и MSH6 (MutS homologs) не только выполняют ту же функцию, но и являются гомологами прокариотического белка MutS. Функцию белка MutL выполняет димер MutLα, состоящий из субъединиц человеческого MLH1 (MutL homologs), гомологичного прокариотическому белку MutL, и белка PMS2.
На данный момент не обнаружено структурных и функциональных гомологов MutH, однако при взаимодействии с белком PCNA (proliferating cells nuclear antigen) фермент MutLα проявляет эндонуклеазную активность и способен производить одноцепочечные разрывы на обеих цепях ДНК. При этом комплекс MutLα и PCNA является специфичным по отношению к дочерней цепи эндонуклеазы, т. к. PCNA, связанный с ДНК, асимметричен.
Функцию 5`-3`-экзонуклеазы выполняет эукариотическая экзонуклеаза I (EXO1). Эукариотическая 3`-5`-экзонуклеаза не была определена однозначно, но некоторые исследования демонстрируют наличие 3`-5`-экзонуклеазной активности у ДНК-полимеразы Polδ. Выявлена связь 3`-5`-экзонуклеазы MRE11 и системы репарации мисматчей. Функции ДНК-полимеразы III и SSB-белков выполняют репликативные ферменты и белки эукариот.
Заболевания, связанные с нарушением работы системы репарации мисматчей
У части пациентов с наследственным неполипозным раком толстой кишки были обнаружены нетипичные опухоли других тканей и органов, предположительно связанные с нарушением работы системы репарации ошибок репликации.
Нетипичные опухоли у пациентов с наследственным неполипозным раком толстой кишки
| Нетипичное онкологическое заболевание | Мутировавший ген зародышевой линии |
| Рак молочной железы | Вариабельные гены |
| Рак коры надпочечников | MSH2 |
| Злокачественная фиброзная гистиоцитома | MSH2 |
| Карцинома предстательной железы | MLH1 |
| Анапластическая карцинома щитовидной железы | MSH2 |
| Меланома | MSH2 |
| Лейомиосаркома | MSH2, MLH1 |
| Глиосаркома | MSH2 |
| Аденокарцинома лёгкого | MSH2 |
| Серозная цистаденома поджелудочной железы | MLH1 |
| Перитонеальная мезотелиома | MLH1 |
| Ацинарно-клеточная карцинома
поджелудочной железы |
MSH6 |
| Эндокринное новообразование поджелудочной железы | Не установлены |
Литература
- Bende S. M. The DNA binding properties of the MutL protein isolated from Escherichia coli / S. M. Bende, R. H. Grafström // Nucleic Acids Research. – 1991. – Vol. 19, № 7. – P. 1549–1555.
- Yang W. Structure and function of mismatch repair proteins // Mutation Research/DNA Repair. – 2000. – Vol. 460, № 3/4. – P. 245–256.
- Molecular biology of the gene / J. D. Watson, T. A. Baker, S. P. Bell [et al.]. – 6th ed. – San Francisco, CA : Pearson/Benjamin Cummings ; Cold Spring Harbor, NY : Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2008.
- Selected Topics in DNA Repair / ed. by C. C. Chen. – Rijeka : InTech, 2011.
- Guarné A. The Functions of MutL in Mismatch Repair: The Power of Multitasking // Progress in Molecular Biology and Translational Science. – 2012. – Vol. 110. – P. 41–70.
- Unusual DNA mismatch repair–deficient tumors in Lynch syndrome: a report of new cases and review of the literature / Y. Karamurzin, Z. Zeng, Z. K. Stadler [et al.] // Human pathology. – 2012. – Vol. 43, № 10. – P. 1677–1687.
- Молекулярная биология клетки. В 3 т. Т. 1 / Б. Альбертс, А. Джонсон, Д. Льюис [и др.]. – 5-е изд. – Ижевск : Регулярная и хаотическая динамика, 2013.
- Kolodner R. D. A personal historical view of DNA mismatch repair with an emphasis on eukaryotic DNA mismatch repair // DNA Repair (Amst). – 2016. – Vol. 38. – P. 3–13.
- Liu D. DNA mismatch repair and its many roles in eukaryotic cells / D. Liu, G. Keijzers, L. J. Rasmussen // Mutation Research/Reviews in Mutation Research. – 2017. – Vol. 773. – P. 174–187.
- Дымшиц Г. М. Основные начала молекулярной биологии : учебное пособие / Г. М. Дымшиц, О. В. Саблина. – Новосибирск : [Новосибирский государственный университет], 2020.